EZ 594 TUNEL細胞凋亡檢測試劑盒（紅色熒光）

產(chǎn)品描述

細胞凋亡的一個(gè)顯著(zhù)特點(diǎn)是細胞染色體 DNA 的降解，這是一個(gè)較普遍的現象。這種降解非常特異并有規律，所產(chǎn)生的不同長(cháng)度的 DNA 片段約為 180 bp-200 bp 的整數倍，表現為瓊脂糖凝膠電泳中呈現特異的梯狀 Ladder 圖譜，本試劑盒采用 TUNEL 法，應用末端脫氧核糖核苷酸轉移酶(Terminal Deoxynucleotidyl Transferase, TdT)在凋亡細胞斷裂DNA 的3′-OH 末端催化摻入EZ 594-dUTP。EZ 594-dUTP標記的 DNA 可以用熒光顯微鏡直接觀(guān)察或者用流式細胞儀定量。 TUNEL法可以選擇性的檢測凋亡細胞， 而非壞死細胞或因輻照和藥物治療而造成的 DNA 鏈斷裂的細胞。TUNEL 實(shí)驗中， TdT 酶催化 dUTP 摻入斷裂的 DNA 鏈的3′-OH末端?？乖瓨擞浀?dUTP（如digoxin-dUTP、生*素-dUTP），因為它可以直接進(jìn)行原位檢測，是一種更快速、直接的檢測手段。

訂購信息

產(chǎn)品組分

運輸與保存

藍冰運輸。-20℃避光保存，有效期24個(gè)月。【注】：避免反復凍融。

實(shí)驗材料（自備）

PBS緩沖液（1×，pH~7.4）

0.2% Triton X-100（PBS配制）

0.1% Triton X-100（PBS配制，其中含5 mg/mL BSA）

4%多**醛（PBS配制）

免疫組化筆

脫蠟溶劑（石蠟切片樣本）

石蠟切片處理相關(guān)試劑

抗熒光淬滅封片劑

ddH₂O

使用方法

一、實(shí)驗設計

1. 陽(yáng)性對照（可選）：

　　DNase I處理制備陽(yáng)性對照載玻片。DNase I可以消化單鏈或雙鏈DNA產(chǎn)生單脫氧核苷酸或單鏈或雙鏈的寡脫氧核苷酸的核酸內切酶，人為造成細胞凋亡。

2. 陰性對照（可選）：

　　使用不含TdT Enzyme的TUNEL Reaction Buffer，用ddH₂O替代TdT Enzyme。

3. 實(shí)驗處理組。

4. 實(shí)驗對照組。

二、實(shí)驗步驟

1. 樣本準備：

對于貼壁細胞或細胞涂片

（1）PBS清洗1次。【注】：如果擔心細胞涂片的細胞貼得不牢，可以干燥樣品使細胞貼得更牢。

（2）固定：加入適量4%多**醛（PBS配制），室溫固定30 min。PBS清洗2次。

（3）通透：加入適量0.2% Triton X-100（PBS配制），室溫通透20 min。PBS清洗2次。

（4）轉步驟2. TUNEL 反應。

對于懸浮細胞或細胞懸液

（1）收集細胞（ 3-5×10⁶個(gè)細胞），1000 rpm離心5 min，PBS清洗2次。

（2）固定：加入適量4%多**醛（PBS配制）充分重懸細胞，4℃固定30 min。2000 rpm離心5 min，PBS清洗2次。

（3）通透：加入適量0.2% Triton X-100（PBS配制），室溫通透20 min。2000 rpm離心5 min，PBS清洗2次。

（4）轉步驟2. TUNEL 反應。

石蠟組織切片

（1）脫蠟與水化：將切片樣本依次放入二甲苯I（10 min）→ 二甲苯II（10 min）→ 100％乙醇I（5 min）→ 100％乙醇II（5 min）→ 95%乙醇（5 min）→ 90%乙醇（5 min）→ 80%乙醇（5 min）→ 70%乙醇（5 min）→ ddH2O沖洗5 min，沖洗2次。【注】：二甲苯有毒，易揮發(fā)，請在通風(fēng)櫥中進(jìn)行此操作。

（2）用濾紙吸干切片樣本周?chē)后w，用免疫組化筆圈好樣本輪廓，以便下游通透與標記。

注：若在后續實(shí)驗操作中發(fā)現免疫組化筆畫(huà)的輪廓圈被破壞，需及時(shí)補畫(huà)。

（3）通透：按1: 100的比例，將2 mg/mL的Proteinase K溶液用PBS稀釋至終濃度20 µg/mL，在每個(gè)樣本上滴加100 µL，使溶液覆蓋全部樣本區域，20-37℃孵育20 min。【注】：Proteinase K可通透細胞膜和核膜，從而使后續步驟的染色試劑充分進(jìn)入細胞核進(jìn)行反應，提高標記效率。孵育時(shí)間過(guò)長(cháng)會(huì )增加組織切片在后續洗滌步驟中從載波片上脫落的風(fēng)險，過(guò)短則可能造成透性處理不充分，影響標記效率。為得到更好的結果，Proteinase K的濃度、孵育時(shí)間、溫度需根據不同類(lèi)型組織樣本進(jìn)行優(yōu)化。

（4）PBS漂洗切片2次，每次5 min，用濾紙吸去多余的液體，將處理好的樣本放在濕盒中保持濕潤。

注：這一步必須把Proteinase K洗滌干凈，否則會(huì )嚴重干擾后續的標記反應。

（5）轉步驟2. TUNEL 反應。

冰凍組織切片

（1）固定：取出冰凍切片，并回溫至室溫。加入適量4%多**醛（PBS配制），室溫固定30 min。PBS漂洗2次，每次10 min。【注】：若是擔心甲醛清洗不干凈，影響最終染色效果?？稍诩兹┕潭ㄍ瓿珊蠹尤脒m量2 mg/mL 甘*酸清洗 10 min，中和殘留的固定液，再進(jìn)行PBS清洗。

（2）用濾紙吸干切片樣本周?chē)后w，用免疫組化筆圈好樣本輪廓，以便下游通透與標記。

注：若在后續實(shí)驗操作中發(fā)現免疫組化筆畫(huà)的輪廓圈被破壞，需及時(shí)補畫(huà)。

（3）通透：按1: 100的比例，將2 mg/mL的Proteinase K溶液用PBS稀釋至終濃度20 µg/mL，在每個(gè)樣本上滴加100 µL，使溶液覆蓋全部樣本區域，20-37℃孵育20 min。【注】：Proteinase K可通透細胞膜和核膜，從而使后續步驟的染色試劑充分進(jìn)入細胞核進(jìn)行反應，提高標記效率。孵育時(shí)間過(guò)長(cháng)會(huì )增加組織切片在后續洗滌步驟中從載波片上脫落的風(fēng)險，過(guò)短則可能造成透性處理不充分，影響標記效率。為得到更好的結果，Proteinase K的濃度、孵育時(shí)間、溫度需根據不同類(lèi)型組織樣本進(jìn)行優(yōu)化。

（4）PBS漂洗切片2次，每次5 min，用濾紙吸去多余的液體，將處理好的樣本放在濕盒中保持濕潤。【注】：這一步必須把Proteinase K洗滌干凈，否則會(huì )嚴重干擾后續的標記反應。

（5）轉步驟2. TUNEL 反應。

陽(yáng)性處理（僅陽(yáng)性對照進(jìn)行此步驟，其他樣品直接進(jìn)行TUNEL反應步驟）

（1）按1: 10的比例用ddH2O將10× DNase I Buffer稀釋成1× DNase I Buffer備用。

（2）滴加100 µL 1× DNase I Buffer到已處理的樣本上，覆蓋全部樣本區域，室溫平衡5 min。

（3）用1× DNase I Buffer以1: 100稀釋DNase I (2 U/μL)至終濃度20 U/mL的工作液。

（4）棄去Buffer，加入100 μL濃度為20 U/mL的 DNase I工作液，室溫孵育10 min。

（5）棄去DNase I工作液，PBS清洗2次。

（6）轉步驟2. TUNEL 反應。

2. TUNEL 反應

配制TUNEL反應液（即用即配）：

對于貼壁細胞、細胞涂片或組織切片

（1）每個(gè)樣本加入50 μL TUNEL反應液，使反應液均勻覆蓋樣本。37℃避光孵育適宜的時(shí)間（細胞推薦染色時(shí)間30min-1h，組織染色時(shí)間推薦2h）。【注】：50 μL TUNEL反應液適合涂片、切片或96孔板（其他不同孔板可以適當調整TUNEL反應液體積，覆蓋細胞即可）。如果待檢測的樣品為涂片、切片或在24孔板、12孔板或6孔板中，可以使用防蒸發(fā)膜，或自行嘗試使用自封袋或者其它適當材料自行裁剪成比孔略小的圓形塑料片，滴加TUNEL反應液后覆蓋在樣品上，可以防止TUNEL反應液蒸發(fā)，并且使TUNEL反應液均勻覆蓋樣本。

（2）棄去TUNEL 反應液，PBS漂洗2次，每次5 min。【注】：為了降低背景，PBS漂洗切片1次后，可再用0.1% Triton X-100（PBS配制，其中含5 mg/mL BSA）漂洗3次，每次 5 min，這樣游離的未反應的標記物可以清除較干凈。

（3）（可選）每個(gè)樣本加入適量濃度為5 μg/mL 的DAPI染液，室溫避光孵育5 min。染色完成后，棄去DAPI染液，PBS漂洗2次，每次5 min。

（4）（可選）切片封片：將切片依次在純水、70%乙醇、80%乙醇、90%乙醇、95%乙醇、無(wú)水乙醇中浸沒(méi)5 min，最后將切片樣本置于染色缸中以新鮮的二甲苯浸泡，透明化處理2次，每次5 min。脫水完成后，擦去切片周?chē)囊后w，每個(gè)樣本滴加50 μL抗熒光淬滅封片劑（抗熒光淬滅封片劑可能會(huì )不適用于某些染料，實(shí)驗前建議進(jìn)行預實(shí)驗測試匹配性），蓋上蓋玻片，用鑷子的鈍端輕輕敲擊蓋玻片，去除氣泡以使封片。

（5）用濾紙吸去多余的液體，向樣本區域加100 μL PBS保持樣本濕潤，立即在熒光顯微鏡下觀(guān)察。

對于懸浮細胞或細胞懸液

（1）每個(gè)樣本管加入50 μL TUNEL反應液輕輕重懸細胞，37℃避光孵育30~60 min。每隔15 min用微量移液器輕輕重懸細胞。

（2）2000 rpm 離心5 min，棄去TUNEL 反應液，加入適量0.1% Triton X-100（PBS配制，其中含5 mg/mL BSA）輕輕重懸細胞，并清洗2次。

（3）每個(gè)樣本管加入100 μL濃度為5 μg/mL的DAPI染液，室溫避光孵育5 min。

（4）加入400 μL PBS重懸細胞，立即用流式細胞儀檢測或進(jìn)行涂片后在熒光顯微鏡下觀(guān)察。

注意事項

1. 本產(chǎn)品僅限于科學(xué)實(shí)驗研究使用，不得用于臨床診斷、治療等領(lǐng)域。

2. 使用前請將產(chǎn)品瞬時(shí)離心至管底，再進(jìn)行后續實(shí)驗。

3. 染色背景較重或非特異性著(zhù)色明顯時(shí)可適當減少染色時(shí)間。

4. 實(shí)驗時(shí)建議增加陰性對照和陽(yáng)性對照組。

5. 組分A使用時(shí)請佩戴口罩、手套，如接觸皮膚，請立即用大量水沖洗。

6. 熒光染料均存在淬滅問(wèn)題，請盡量注意避光，以減緩熒光淬滅。

7. 為了您的安全和健康，請穿實(shí)驗服并戴一次性手套操作。

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